AMAMFSAc19041 蜂蜜 糖 分离 果糖 葡萄糖 还原二糖(以麦芽糖计) 蔗糖 高柱或“葡聚糖” 木炭柱色谱法
AM-AM-FS-Ac-19041
蜂蜜中糖的分离
1.原理概要
先将蜂蜜样品吸附到木炭上,然后洗脱,依次流出的是单糖、二糖及多糖组分。二糖对葡萄糖及果糖测定的干扰则可消除。洗脱采用逐渐增大醇浓度的方法,然后测定各种单糖,蔗糖还原二糖(以麦芽糖计),经水解后测三糖及更高级糖总量。
2.试验过程
2.1.吸附桂的制备及标淮化
柱外径为22mm,长为370mm,在其上部由一个35/20标准锥度的球形接头与一个1L的球形容器连接。吸附剂由DarcoG-60木炭与快速助滤剂按1+1比例混合组成。塞一个玻棉塞,从下部湿润,加足量的干燥吸附剂到干燥的管中(23-26cm),加真空系统,并轻敲柱的上部,吸附剂的体积可被压缩为17cm。从管中除去过量的木炭,并在上层加助滤剂,并轻轻压紧U-1.5cm)。用5OOml水及250ml 50%乙醇洗柱子,并在50%乙醇介质中平衡过夜。在用水洗脱,压力为62KPa的情况下柱流速应在5.5-8.0ml/min之间。流速太慢会大大延缓分析速度。
洗脱液中醇的含量应调整到适合于所使用木炭的保留能力。用250ml水洗净柱中的醇,定量地加含1g无水葡葡糖1Oml溶液到柱的上端,用吸气方式使其进入柱填料中:(但不要让柱干),在柱上端加300ml水,停止吸气,加压(≤6gkPa),用称量过的烧杯接5份洗脱液,每5Oml为一份。第一份5Oml应包括将样品引入柱中时吸出的1Oml,将各份样品在蒸汽浴上蒸发,在80-10O℃的真空箱中干燥,称重。
从柱的上端倒出多余的水,分别用5Oml 30%乙醇和250ml水洗柱子,再加含1g无水葡萄糖1Oml 1%的乙醇液,重复色层分离,用250ml 1%乙醇溶液按上述相同的方式洗脱。选择洗脱剂1,使其在15Oml内能全部洗出葡萄糖,若必要可用2%乙醇体系重复色层分离。
用250ml水和2Oml 5%乙醇分别洗柱子。在柱的上端加含1OOmg麦芽糖和1OOmg蔗糖1Oml 5%的乙醇液。按上述方法用250ml 5%的乙醇溶液洗脱,称量每5Oml溶液蒸干后固体的量,必要时可分别用7,8和9%的乙醇洗脱以找出洗脱剂2,洗脱剂2应能在2OOml内洗脱≤98%的二糖。最先选择的洗脱剂不应洗脱出二糖。对不同的木炭填料两种洗脱剂比较满意的组合方式为1%,7%;2%,8%和2%,9%,最后用100ml 50%的乙醇洗柱子,柱子保存在该溶剂系统中。
2.2.各组分的制备
用250ml HD洗柱子,倒掉上端剩余的溶剂,加2Oml洗脱剂1,使其通过柱子,弃去流出液,在5Oml烧杯中把1g样品溶解于1Oml洗脱剂中。用长颈漏斗将样品转移至柱的上端,并使其进入柱的填料中。用15ml洗脱剂漂洗烧杯及漏斗,并加入到柱的上端。从引入样品开始收集所有的流出液到250ml容量瓶中。加250ml洗脱剂1,总共准确收集250ml(流分1,单糖)。倾倒出过量的溶剂,加入265-270ml洗脱剂2,用容量瓶收集250m1(流分2,二糖)。从上端倒出多余的洗脱剂,加110ml 5%的乙醇(洗脱剂3),用容量瓶收集1OOml(流分3,三糖及三糖以上组分)。将各组分充分摇匀。
柱子在用50%的乙醇饱和下,将出口封住后可长期保存。使用8次后废弃。
果糖
2.3.试剂
使用19-15A中的试剂及下述试剂:
19-15A:【(a)碳酸盐50试剂,5g KI——在2L烧杯中加约500ml水,溶解无水Na2CO3和四水酒石酸钾钠各25g。用漏斗在搅拌下加入75ml 100g/LCuSO4·5H2O溶液,漏斗的下端应没入烧杯的液面。加20g NaHCO3,溶解后加5g KI。将此液转移至1L的容量瓶,加250ml的0.100 Mol/L KIO3溶液(将3.567g KIO3溶于1L水中配成),稀释至刻度,用玻璃砂漏斗过滤,使用前陈化过夜。(b)碘化物-草酸盐溶液——溶解2.5g KI和2.5g K2C2O4于水中;并稀释至100ml。每周新配制一次。(C)硫代硫酸钠标准溶液——0.0O25 Mol/L。每天由0.05 Mol/L的标准贮备液配制。(d)淀粉指示剂——将2.5g可溶性淀粉和约10mg的HgI2在少量水中研磨,然后溶于约5OOml沸水中。(e)Na2S2O3标准溶液——0.05M。】
(a)碘溶液——0.O5 Mol/L。将13.5g纯的碘溶解于含24g KI的200ml H2O中,稀释到2L,不要标定。
(b)Na2S04溶液——1%,将1g Na2S04溶解在100ml H2O中。每天新配制。
(c)溴甲酚绿溶液——将15Omg溴甲酚绿溶解在100ml H2O中。
2.4.测定
移取2Oml流分1到2OOml容量瓶中。用移液管加40ml O.O5M碘溶液;然后在剧烈混合的情况下3Os内加25ml O.1 Mol/LNaOH,并立即将容量瓶放进18±0.1℃的水浴中。在加碱后准确1Omin时加5ml 0.5 Mol/L H2SO4并将容量瓶从水浴中移出。用Na2SO4溶液刚好还原碘,在接近终点前加2滴淀粉(19-15A(d))。必要时可用稀的碘溶液返滴定。加5滴溴甲酚绿,用1 Mol/L NaOH正好中和溶液,然后使溶液对指示剂刚显酸性,稀释至刻度,用19-15B测其中5ml溶液的还原值。
重复两次空白及样品的测定,空白值减去样品滴定值后计算果糖含量:
%果糖=500((滴定值×O.1150)+0.0915)×1OO/mg样品
葡萄糖测定中果糖的校正=f.c.=〔(滴定值×O.1150)+0.0915〕×40。括号内的值为5ml溶液中果糖的毫克数,该值的有效范围是0.5-1.75mg。
葡萄糖
2.5.试剂
Na2S203溶液——0.O025 Mol/L。由己标定的0.05 Mol/L贮备液制备。
2.6.测定
移取2Oml流分1到2个250ml锥形瓶中。在空气流下将瓶子放在蒸汽浴上蒸干,加2Oml H2O,用移液管加2Oml O.O5 Mol/L碘,缓慢地加25ml O.1 Mol/L NaOH,这一步与测果糖的步骤相同。然后立即放进18±0.1℃的水浴中,在加碱后正好1Omin时加5ml 1 Mol/L H2S04,将瓶子从水浴锅上移开,用0.O025 Mol/L Na2S2O4滴定,用淀粉溶液做指示剂。
用水测2份空白,空白值减去样品滴定值,计算葡萄糖含量:
%葡萄糖=56.275〔滴定值-0.0125×f.c.〕×1OO/mg样品
式中f.c.为在果糖测定中确定的果糖校正值。方程式在2Oml溶液中葡萄糖含量为10-5mg的范围内有效。在葡萄糖存在下,1mg果糖需要 0.01215ml的0.O025 Mol/L Na2S2O4(果糖范围为15-6Omg)。
还原二糖(以麦芽掂计)
4.7.测定
移取5m1流分2到25-2OOmm试管中,按19-15B测还原值,只不过需将试管煮3Omin。可用15min的水空白值,按下式计算还原二糖(以麦芽糖计):
%麦芽糖=50〔(滴定度×0.22)+0.075〕×1O0/样品mg数
用于蔗糖测定中麦芽糖的校正因子=m.c.=麦芽糖滴定值×O.92。括号内数量为5ml溶液中麦芽糖的毫克数,该值的有效范围为0.15-3.8Omg麦芽糖。15min时麦芽糖还原值是最终还原值的92%。
蔗糖
2.8.测定
移取25ml流分2到5Oml容量瓶中,加5ml 6Mol/L HCl和5ml水。混匀,在60℃水浴中放置17min,冷却,以溴甲酚绿指示用5 Mol/L NaOH(103g/5OOml)中和(可用聚乙烯瓶装NaOH)。NaOH过量时可用1 Mol/L H2S04调至指示剂的酸色。稀释至刻度,然后取5ml溶液用Shaffei-Somogyi法测定还原值,19-15B,从空白值减去该值,并按下表所做的标准曲线计算蔗糖的含量:
5ml溶液中的蔗糖量 0.O25 Mol/L Na2S2O4
(被氧化的量,mg) (需要量,ml)
0.255 1.75
0.502 3.95
1.004 8.72
1.260 11.98
查标准曲线可得到S1(S1=相当于麦芽糖校正的蔗糖量)(H),及S2(S2=相当于蔗糖滴定值的蔗糖量)。
%蔗糖=50(2S2-S1)×1O0/样品毫克数
高糖或“葡聚糖”
2.9.测定
移取25ml流分3到50ml容量瓶中,加5ml 6 Mol/L HCl和5ml水,在沸水浴中煮沸45min,冷却,按测定蔗糖时的方法中和,稀释至刻度。测还原值,19-15B。从空白值中减去滴定值,按下表做的曲线查出葡萄糖的当量值。
葡萄糖,mg 滴定值,ml
0.05 0.20
0.10 0.60
0.25 1.85
0.50 4.00
1.00 8.50
2.00 17.60
%高糖=40(葡萄糖当量值)×1OO/mg样品
注:对大多数准确的测定,Shaffer-Somogyi值变化必须在0.04ml之内。对高准确度的测定建议对所有的步骤进行检查,包括柱子,使用己知量的葡萄糖,果糖,蔗糖,麦芽糖及棉子糖(对其中的水分需校正)的标准混合物,在计算%果糖计算式中糖与Na2S204体积ml之间的关系〔(滴定值×0.1150)十0.0915〕可通过分析已知量的葡萄糖和果糖混合物中果糖的量来确定。麦芽糖含量计算式中〔(滴定值×0.22)+0.075〕可通过分析已知量的麦芽糖溶液来确定。
柱效可以按19-44C通过用纸层析分离第1,2和3流分来检查。
3.来源
AOAC官方方法9.11(第17版)
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